Stage de recherche Master 1 en écotoxicologie : Mesure de l’activité de l’acétylcholinestérase chez la crevette bouquet, Palaemon serratus

Contexte
La mobilisation d’outils basés sur la mesure d’effets biologiques, en appui de la surveillance de la qualité
environnementale, a largement démontré son intérêt (Wernersson et al. 2015). Ces outils visent une meilleure
prise en compte des effets toxiques des contaminants sur les organismes (e.g. en intégrant les effets des
molécules non ciblées par les analyses chimiques et les effets de mélanges) et ainsi de préciser les liens de
causalité entre pressions et impacts. Parmi ces outils, les biomarqueurs (i.e. mesures d’effets à l’échelle subindividuelle)
ont été développés pour caractériser l’exposition et/ou les effets de familles de composés ayant des
modes d’action spécifique.
L’UMR I-02 SEBIO travaille depuis plusieurs années au développement de biomarqueurs chez des crevettes
palémonidés ; des crustacés proposés comme des modèles pertinents pour l’évaluation de l’impact des pressions
anthropiques en milieux marins et estuariens (Key et al. 2006). Une méthodologie de déploiement d’organismes
dans des systèmes d’encagement a notamment été mise au point pour un meilleur contrôle de l’exposition,
assurer le suivi des stations d’intérêt indépendamment de la disponibilité des spécimens. Une des voies de
poursuite de ces travaux consisterait à compléter la pale[e de modes d’action couverte par les biomarqueurs
actuellement développés chez la crevette (e.g. génotoxicité, immunotoxicité), en explorant la pertinence d’autres
mesures biologiques.
Objectifs
La mesure de l’activité de l’acétylcholinestérase (AChE) est de loin le biomarqueur le plus étudié et le plus utilisé
en toxicologie environnementale pour révéler un mode d’action neurotoxique (Legradi et al., 2018). Initialement
ce biomarqueur a été développé pour diagnostiquer spécifiquement les traces d’insecticides organophosphorés
et carbamates dont le mode d’action repose sur l’inhibition de l’AChE. Certains auteurs ont néanmoins souligné
un caractère plus générique de ce marqueur à fortes concentrations pour divers contaminants, suggérant un
potentiel intérêt pour des applications dans des milieux marqués par une multicontamination (Lione[o et al.
2013).
Le développement méthodologique de la mesure de l’AChE chez la crevette P. serratus a été précédemment initié,
au laboratoire. L’objectif de la présente proposition de stage consistera à i) vérifier certains points d’optimisation
méthodologique du dosage de l’ACHE chez P. serratus (i.e. conditions d’obtention de l’extrait enzymatique et
cinétique michaelienne), ii) appliquer la méthode sur des échantillons de natures diverses (i.e. spécimens exposés
en laboratoire à un contaminant modèle ou encagés in situ sur des stations contrastées), et iii) discuter de la
pertinence de l’outil à la lumière des résultats.
Durée et période du stage
Stage de 2 mois – second semestre 2025 (à préciser avec le ou la candidate)
Profil recherché
Etudiant.e en Master 1 en sciences de l’environnement, écotoxicologie et/ou biologie des organismes. Le ou la
candidat.e devra être motivé.e, à l’aise au laboratoire, rigoureux.se et capable de montrer une certaine
autonomie une fois formé.e aux différentes tâches. Une bonne maitrise des pratiques de paillasse et/ou des
traitements statistiques sur « R » sera grandement appréciée.
Travail demandé
– Dosages biochimiques
– Traitement statistique et interpréta*on des résultats
– Rédaction d’une procédure méthodologique et d’un rapport scientifique
Structure d’accueil
UMR-I 02 Stress Environnementaux et BIOsurveillance des milieux aquatiques (SEBIO) – Université Le Havre
Normandie (h[ps://umr-sebio.fr/)
25, rue Philippe Lebon – BP 1123 – 76063 LE HAVRE, France
Directeur du Laboratoire : C. Boulangé-Lecomte
Encadrement
Benoit XUEREB (benoit.xuereb@univ-lehavre.fr) & Aurélie DUFLOT (aurelie.duflot@univ-lehavre.fr)
Formalités de candidature
Merci d’adresser votre CV et le[re de motivation à Benoit XUEREB (benoit.xuereb@univ-lehavre.fr).
NB : les candidatures seront évaluées au fil de l’eau et feront l’objet d’une pré-sélection avant entretien.
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Références
Wernersson A S, Carere M, Maggi C, Tusil P, Soldan P, James A, … Kase R, 2015. The European technical report on aquatic effect-based
monitoring tools under the water framework directive. Environmental Sciences Europe 27, 1–11. hOps://doi.org/10.1186/s12302-015-
0039-4
Key P, Edward F W, Fulton M H (2006). A Review of Grass Shrimp, Palaemonetes Spp., as a Bioindicator of Anthropogenic Impacts.
Environmental Bioindicators, 1,115–28. hOps://doi.org/10.1080/15555270600685115
Legradi J B, Di Paolo C, Kraak M H S, Van der Geest H G, Schymanski E L, Williams A J, … Hollert H (2018). An ecotoxicological view on
neurotoxicity assessment. Environmental Sciences Europe, 30, 1-34. hOps://doi.org/10.1186/s12302-018-0173-x
LioneOo M G, Caricato R, Calisi A, Giordano M E, Schecno T (2013). Acetylcholinesterase as a biomarker in environmental and occupaEonal
medicine: new insights and future perspecEves. BioMed research interna7onal, 2013(1), 321213. hOp://dx.doi.org/10.1155/2013/321213